O balanço nitrogenado é a técnica mais antiga para avaliação da homeostase protéica e é ainda hoje amplamente utilizada. Pelas suas limitações, essa técnica falha em não dimensionar o estado dinâmico em que um mesmo tipo de proteína sofre simultaneamente destruição e síntese em velocidades diferentes. Os métodos para avaliar o ritmo do turnover protéico, in vivo, que utilizam isótopos estáveis, são baseados na transferência do marcador de um aminoácido (traçador), quer a uma proteína específica (método direto) ou ao produto final (nitrogenado) na urina (método indireto). O traçador administrado mistura-se, em umpool único (enriquecimento isotópico) com os demais aminoácidos provenientes tanto da dieta como das fontes endógenas. O marcador isotópico deixa esse pool (precursor) tanto para os processos de síntese de proteínas como oxidação do traçador. Na situação de equilíbrio metabólico, as velocidades de entrada e de saída do marcador no pool precursor são iguais, sendo que, no jejum, o fluxo (turnover) é igual ao catabolismo. Assim, a medida do enriquecimento (abundância) isotópico nos precursores plasmáticos ou nos produtos finais urinários ou, no CO2 expirado ainda permite o cálculo do fluxo nitrogenado, síntese e catabolismo protéico e a oxidação do aminoácido. A maior vantagem da análise do produto final é a obtenção não invasiva das amostras. A técnica de infusão constante do traçador, embora invasiva, possibilita o alcance mais rápido do platô de enriquecimento que a administração de dose única do marcador. A técnica do flooding dose, permite um estudo ainda mais rápido, mas requer a cateterização de pelo menos duas veias. O estudo menos invasivo e mais rápido pode ser feito pela oferta de dose única, via oral, de '5N-Glicina e cálculo do fluxo a partir da '5N-amônia urinária após 9 horas.
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O balanço nitrogenado é a técnica mais antiga para avaliação da homeostase protéica e é ainda hoje amplamente utilizada. Pelas suas limitações, essa técnica falha em não dimensionar o estado dinâmico em que um mesmo tipo de proteína sofre simultaneamente destruição e síntese em velocidades diferentes. Os métodos para avaliar o ritmo do turnover protéico, in vivo, que utilizam isótopos estáveis, são baseados na transferência do marcador de um aminoácido (traçador), quer a uma proteína específica (método direto) ou ao produto final (nitrogenado) na urina (método indireto). O traçador administrado mistura-se, em umpool único (enriquecimento isotópico) com os demais aminoácidos provenientes tanto da dieta como das fontes endógenas. O marcador isotópico deixa esse pool (precursor) tanto para os processos de síntese de proteínas como oxidação do traçador. Na situação de equilíbrio metabólico, as velocidades de entrada e de saída do marcador no pool precursor são iguais, sendo que, no jejum, o fluxo (turnover) é igual ao catabolismo. Assim, a medida do enriquecimento (abundância) isotópico nos precursores plasmáticos ou nos produtos finais urinários ou, no CO2 expirado ainda permite o cálculo do fluxo nitrogenado, síntese e catabolismo protéico e a oxidação do aminoácido. A maior vantagem da análise do produto final é a obtenção não invasiva das amostras. A técnica de infusão constante do traçador, embora invasiva, possibilita o alcance mais rápido do platô de enriquecimento que a administração de dose única do marcador. A técnica do flooding dose, permite um estudo ainda mais rápido, mas requer a cateterização de pelo menos duas veias. O estudo menos invasivo e mais rápido pode ser feito pela oferta de dose única, via oral, de '5N-Glicina e cálculo do fluxo a partir da '5N-amônia urinária após 9 horas.